ميل TSI (TSI Slant)

مبادئ اختبار TSI

يعتمد اختبار TSI على استخدام وسط زرع يحتوي على ثلاثة أنواع من السكريات: الجلوكوز (سكر العنب)، واللاكتوز (سكر الحليب)، والسكروز (سكر القصب). يحتوي الوسط أيضًا على مصدر للحديد (مثل سترات الحديد) لتحديد إنتاج كبريتيد الهيدروجين، وكذلك مؤشر pH، عادةً أحمر الفينول، للكشف عن التغيرات في درجة الحموضة الناتجة عن تخمير السكريات.

عند تلقيح الكائن الحي الدقيق في أنبوب اختبار TSI، فإنه يخضع لظروف هوائية في الجزء العلوي من الأنبوب (الميلان) ولا هوائية في الجزء السفلي (العمود). هذا التباين في الظروف يسمح بتحديد أنماط مختلفة من التفاعلات الأيضية.

مكونات وسط TSI

  • الجلوكوز (0.1%): سكر بسيط يتم تخميره بسهولة من قبل معظم الكائنات الحية الدقيقة.
  • اللاكتوز (1%) والسكروز (1%): سكريات معقدة تخضع للتخمير من قبل بعض الكائنات الحية الدقيقة.
  • ببتون (بروتين متحلل): يوفر النيتروجين والكربون اللازمين لنمو الكائنات الحية الدقيقة.
  • كلوريد الصوديوم: يحافظ على الضغط الأسموزي.
  • سيترات الحديد والأمونيوم: للكشف عن إنتاج كبريتيد الهيدروجين (H₂S).
  • أحمر الفينول: مؤشر pH يتغير لونه اعتمادًا على درجة الحموضة. يبقى أحمر في ظل الظروف المحايدة والقلوية ويتحول إلى اللون الأصفر في ظل الظروف الحمضية.
  • أجار: عامل التصلب الذي يوفر وسطًا صلبًا لنمو الكائنات الحية الدقيقة.

طريقة إجراء اختبار TSI

تتضمن عملية إجراء اختبار TSI الخطوات التالية:

  1. تحضير الوسط: يتم تحضير وسط TSI وفقًا لتعليمات الشركة المصنعة.
  2. التعقيم: يتم تعقيم وسط TSI في الأوتوكلاف لقتل أي كائنات حية دقيقة موجودة.
  3. التلقيح: يتم تلقيح أنبوب TSI بعينة من الكائن الحي الدقيق المراد اختباره. يتم ذلك عن طريق وخز قاعدة الأنبوب (العمود) وتمرير العينة على طول السطح المائل (الميلان).
  4. التحضين: يتم تحضين الأنبوب في درجة حرارة 35-37 درجة مئوية لمدة 18-24 ساعة.
  5. الملاحظة والتفسير: بعد فترة التحضين، يتم فحص الأنبوب بحثًا عن التغيرات في اللون، وإنتاج الغاز، وإنتاج كبريتيد الهيدروجين.

تفسير النتائج

تعتمد تفسير نتائج اختبار TSI على التغيرات في لون الميلان والعمود، بالإضافة إلى وجود أو عدم وجود إنتاج الغاز و H₂S. فيما يلي بعض التفسيرات الشائعة:

  • أحمر/أحمر (K/K): لا يتم تخمير أي من السكريات. يعتبر هذا النمط مميزًا للكائنات الحية الدقيقة غير المخمرة، مثل بعض أنواع الشيجيلا والبروتيوس.
  • أحمر/أصفر (K/A): يتم تخمير الجلوكوز فقط. يؤدي تخمير الجلوكوز إلى إنتاج حمض في كل من الميلان والعمود في البداية، مما يتسبب في تحول لون الأنبوب إلى اللون الأصفر. ومع ذلك، في حالة وجود كمية صغيرة من الجلوكوز، يتم استخدامه بسرعة في الجزء الهوائي (الميلان)، ويعود اللون إلى الأحمر بسبب استخدام الببتون.
  • أصفر/أصفر (A/A): يتم تخمير الجلوكوز واللاكتوز و/أو السكروز. يشير هذا النمط إلى إنتاج حمض في كل من الميلان والعمود.
  • أسود (H₂S إيجابي): يشير إلى إنتاج كبريتيد الهيدروجين. يتفاعل كبريتيد الهيدروجين مع أملاح الحديد في الوسط لتكوين كبريتيد الحديد، وهو راسب أسود. قد يغطي اللون الأسود الأنبوب بأكمله، أو قد يقتصر على منطقة معينة، مثل قاعدة الأنبوب.
  • فقاعات أو تشقق في الأجار: يشير إلى إنتاج الغاز (عادةً ثاني أكسيد الكربون) من تخمير السكريات.

ملاحظة: يتم استخدام الأحرف K و A لتمثيل تفاعلات القلوية (K – alkaline) والحمضية (A – acidic) في الميلان (K/A) والعمود (A/A أو K/K).

أهمية اختبار TSI في التشخيص

يساعد اختبار TSI في تحديد الأنواع المختلفة من البكتيريا المعوية، بما في ذلك:

  • البكتيريا المعوية: مجموعة كبيرة من البكتيريا سالبة الجرام، بما في ذلك الإشريكية القولونية (E. coli)، والسالمونيلا، والشيجيلا، والكلبسيلة، والبروتيوس.
  • تمييز السالمونيلا من الكائنات الحية الدقيقة الأخرى: غالبًا ما تنتج السالمونيلا تفاعل K/A مع إنتاج H₂S.
  • التعرف على الكائنات الحية الدقيقة غير المخمرة: يساعد اختبار TSI في تحديد الكائنات الحية الدقيقة التي لا تخمر أي من السكريات الموجودة في الوسط.

حدود اختبار TSI

في حين أن اختبار TSI هو أداة مفيدة، إلا أن له بعض القيود:

  • ليس نهائيًا: لا يمكن لاختبار TSI وحده تحديد نوع الكائن الحي الدقيق بشكل نهائي. يجب استخدامه جنبًا إلى جنب مع الاختبارات الأخرى، مثل اختبارات التفاعل الكيميائي الحيوي الأخرى، واختبارات الحساسية للمضادات الحيوية، والزراعة على أوساط انتقائية.
  • النتائج غير الدقيقة: قد تكون النتائج غير دقيقة إذا لم يتم اتباع البروتوكولات بشكل صحيح، أو إذا كانت العينة ملوثة.
  • التعرف على الكائنات الحية الدقيقة غير النمطية: قد لا يتعرف الاختبار على بعض الكائنات الحية الدقيقة التي لها خصائص أيضية غير نمطية.

نصائح لتفسير النتائج

لتحسين دقة تفسير نتائج اختبار TSI، اتبع النصائح التالية:

  • استخدم عينات جديدة: استخدم عينات طازجة من المزرعة.
  • التلقيح الصحيح: تأكد من وخز قاعدة الأنبوب وتمرير العينة على طول الميلان.
  • التحضين في درجة الحرارة الصحيحة: قم بتحضين الأنبوب في درجة حرارة 35-37 درجة مئوية.
  • قراءة النتائج في الوقت المناسب: اقرأ النتائج بعد 18-24 ساعة من التحضين.
  • استشر المرجع: ارجع إلى المراجع المناسبة للحصول على معلومات إضافية حول تفسير النتائج.

خاتمة

اختبار السكر الثلاثي للحديد (TSI) هو اختبار ميكروبيولوجي أساسي يستخدم في المختبرات لتحديد خصائص التمثيل الغذائي للكائنات الحية الدقيقة، خاصةً تلك المتعلقة بأمراض الجهاز الهضمي. يوفر هذا الاختبار معلومات قيمة حول قدرة الكائن الحي الدقيق على تخمير السكريات وإنتاج كبريتيد الهيدروجين. على الرغم من أن اختبار TSI له قيود، إلا أنه أداة مهمة في عملية التشخيص، حيث يساعد في تحديد الأنواع المختلفة من البكتيريا المعوية وتوجيه المزيد من الاختبارات لتحديد نوع الكائن الحي الدقيق بدقة.

المراجع



“`

Scroll to Top